Monografias | Propagación vegetativa

La historia de la producción vegetal se ha caracterizado porel desarrollo de tecnologías de avanzada que facilitan y optimizan la propagaciónvegetativa. La posibilidad de controlar el ambiente (uso de nieblas,calefactores, termostatos, serenos, etc), amplia el espectro de especies quepueden seleccionarse y multiplicarse de esta forma (Marsden, 1955).

La propagación vegetativa o asexual se utiliza para produciruna planta que posea el mismo genotipo que la planta madre (planta donadora) yesto es posible porque todas las células de una planta poseen la informaciónnecesaria y/o suficiente para reproducir la planta entera (Hartmann et al.,1992).

En la multiplicación por estacas solo es necesario que unnuevo sistema de raíces adventicias se desarrolle, ya que la estaca posee yemascon aptitud potencial para desarrollar nuevos vástagos (Hartmann et al., 1992).

Las raíces adventicias son de dos tipos: raíces preformadasy raíces de herida (inducidas). Las raíces preformadas se forman naturalmentedurante los primeros periodos de desarrollo del vástago, pudiendo emerger antesde la realización de estacas o permaneciendo en dormición hasta que serealicen las mismas y sean colocadas en condiciones ambientales favorables. Lasraíces de herida desarrollan sólo después que la estaca es cortada, porefecto de la herida producida en la preparación de la misma. Estas raíces, sonconsideradas como formadas de novo (nueva formaciión)(Davies y Hartmann,1988)

Cuando se prepara una estaca, las células más cercanas a lasuperficie son lesionadas y expuestas, comenzando la respuesta de cicatrizaciónde la herida (Cline y Neely, 1983). En el proceso de regeneración de raíces,ocurren los siguientes tres pasos:

- A medida que las células externas, lesionadas, se mueren,se forma una lámina necrótica que

sella la herida con un material suberoso y se tapona elxilema con gomas. Esta lámina ayuda a

proteger la superficie del corte de desecamientos y patógenos.

- Por detrás de la lámina, células vivas comienzan adividirse después de algunos días y una capa de células parenquimatosas(callo), forma una peridermis.

- Ciertas células, en la vecindad del cambium vascular yfloema, comienzan a dividirse e

inician la formación de raíces adventicias.

Varias clases de reguladores de crecimiento, tales comoauxinas, cytokininas, giberelinas y etileno e inhibidores, como el ácido abscísicoy fenólico, influyen sobre la iniciación de raíces. De ellas, la auxina es laque tiene el mayor efecto sobre la formación de raíces en estacas (Hartmann etal., 1992).

Efecto de las hojas sobre el enraizamiento: (Hartmannet al., 1992)

Es ampliamente conocido que la presencia de las hojas en laestaca, ejerce una fuerte influencia, estimulando la iniciación de raíces.

La traslocación de carbohidratos desde las hojas sin dudacontribuye, a la formación de raíces, sin embargo, la mayor promoción delenraizamiento por efecto de las hojas y yemas, es posiblemente resultado deotros factores más directos (Breen, 1974). Hojas y yemas, son conocidas comopoderosos centros productores de auxinas, y los efectos son observadosdirectamente por debajo de ellos, demostrando el transporte polar, desde el ápicea la base. Estacas de ciertas especies son fácilmente enraizadas, mientras queestacas de otras enraízan con mayor dificultad.

La fotosíntesis de las estacas no es un requerimientoabsoluto para la formación de raíces. Esto puede ser observado en estacas conmuchas hojas, que se llevan a un sitio oscuro y con estacas deshojadas (nofotosíntetizantes),que enraízan (Davis y Potter, 1981). Pero puede generalizarse que, la fotosíntesisen estacas, es probablemente más importante después de la iniciación de raícesy ayudaría en el desarrollo y crecimiento más rápido de las raíces (Davis,1989).

Al enraizar estacas tomadas de plantas individuales de unaespecie, que de ordinario se propaga por semillas, la experiencia ha demostradoque pueden existir amplias diferencias entre estacas tomadas de ellas (efectosy/o variabilidad del genotipo )(Hartmann et al., 1992).

Diferencias entre las zonas apicales y básales de la rama: (Hartmannet al., 1992)

En la composición química de las ramas hay marcadasdiferencias de la base a la punta. En las estacas tomadas de distintas partes delas ramas en ocasiones se observa variabilidad en la producción de raíces y enmuchos casos el mayor porcentaje de enraíce se obtiene en estacas procedentesde la porción basal de la rama.

Puede ocurrir que en tallos de un año o más de edad, loscarbohidratos se hayan acumulado en la base de las ramas y tal vez se hanformado algunas iniciales de raíz, posiblemente bajo la influencia desustancias promotoras de raíces procedentes de yemas y de hojas, y por lo tantoel mejor material para estacas puede provenir de la porción basal de esasramas.

Pero, el mejor enraizamiento de las estacas apicales podríaexplicarse por la posibilidad de que en el ápice se encuentre una mayorconcentración de sustancias endógenas promotoras del enraizamiento ya que lasmismas se originan en las secciones apicales (yemas apicales). También, lasestacas apicales son más jóvenes y en consecuencia, hay más células capacesde volverse meristemáticas. En las especies que enraízan fácilmente, estefactor es de poca importancia, cualquiera sea la posición de la estaca en larama.

En la mayoría de las plantas se pueden hacer estacas deramas en condición vegetativa o en condición reproductiva. Nuevamente, enespecies que enraízan fácilmente no existen grandes diferencias entredistintos estados fenológicos en que se encuentre la planta, pero en especiesque enraízan con dificultad, éste puede ser un factor de importancia. Porejemplo, en dalia, las estacas que portan yemas florales tienen mayor dificultadpara enraizar que las estacas que tienen solamente yemas foliares (Biran yHalevy, 1973).

Hay diversos medios y mezclas de éstos que se usan con elfin de hacer enraizar estacas. Para obtener buenos resultados se requieren lassiguientes características (Richards; Warneke y Aljibury, 1964):

- El medio debe ser lo suficientemente firme y denso paramantener las estacas en su sitio durante el enraíce; su volumen no debe variarmucho, ya sea seco o mojado; resulta perjudicial que tenga un encogimientoexcesivo al secarse.

- Debe retener la suficiente humedad para que no seanecesario regarlo con mucha frecuencia.

- Debe ser lo suficientemente poroso, de modo que se escurrael exceso de agua y permita una aireación adecuada.

- Debe estar libre de malezas, nemátodos y otros patógenos.

- No debe tener un nivel excesivo de salinidad.

- Debe poderse esterilizar con vapor o químicos sin quesufra efectos nocivos.

- Debe existir una adecuadada provisión de nutrientes paratodo el período, aunque suplementaciones con fertilizantes de lenta liberaciónson frecuentemente recomendados.

Un medio ideal de propagación, debe estar provisto desuficiente porosidad para permitir una buena aireación y una alta capacidad deretención de agua, debe tener un buen drenaje y estar libre de patógenos(Hartmann et al., 1992).

La arena está formada por pequeños granos de piedra, dealrededor de 0.05 a 2 mm de diámetro, dependiendo su composición mineral de laque tenga la roca madre. En propagación, generalmente, se emplea arena decuarzo. De preferencia se debe fumigar o tratar con calor antes de usarla paraesterilizarla. Virtualmente no contiene nutrientes minerales y no tienecapacidad amotiguadora (Buffer) o capacidad de intercambio cationico. Casisiempre se usa en combinación con algún material orgánico (Hartmann et al.,1992).

La turba se forma con restos de vegetación acuática, demarismas, ciénagas o pantanos, que se ha preservado bajo el agua en un estadode descomposición parcial.

La turba de pantanos esta formada por restos de pastos,juncos y otras plantas de pantanos. Este tipo de turba es variable en sucomposición y color. Su pH varía alrededor de 4 a 7.5 y su capacidad deretención de humedad es de 10 veces su peso seco (Hartmann et al., 1992).

El humus de lombriz con forma de restos vegetales, restosanimales (no deben utilizarse crudos) y restos domiciliarios orgánicos, queacumulados, forman un compost, y con el agregado de lombrices que digieren lamateria orgánica, resulta en un producto final, llamado vermicompuesto,semejante al humus, atóxico para los vegetales y excelente mejorador de suelos.

Algunas características del humus de lombriz modifican laspropiedades físico - químicas y microbiologicas del suelo: a)- le comunica alsuelo mayor porosidad y aireación, mejorando también la infiltración yfavoreciendo el desarrollo radical; b)- se liberan gradualmente los nutrientesque las plantas necesitan, pues al mantener el pH dentro de un rango cercano ala neutralidad (6-7)( con gran poder buffer) , les permite una mayorsolubilidad. El tenor de microelementos: Cu, Mn, Mo y Zn, es elevado; c)-contiene los mismos microorganismos benéficos que tiene el suelo, pero en mayorcantidad, destacándose los que transforman la celulosa y los que intervienen enla asimilación de nitrógeno y fósforo; d)- aumento de la velocidad deemergencia de las plántulas; e)- permite una larga permanencia de ciertoshongos benéficos del suelo. Estos microorganismos que suelen ser efectivos paracontrolar hongos dañinos del suelo, suelen tener en él poca durabilidad. Elhumus de lombriz les permite un buen desarrollo tórnadolo efectivo en la lucha,por ejemplo contra dampig off ( Mirabelli, 1995).

Mezclas de suelo para cultivo en maceta:(Hartmann et al.,1992)

En los sistemas de propagación, las estacas enraizadasalgunas veces se plantan directamente en el campo, pero por lo general, esto noes satisfactorio para la sobrevivencia de las mismas, por ello con frecuencia seles inicia en una mezcla de suelo en diversos recipientes.

Para lograr mezclas de suelo más uniformes y de mejortextura para macetas, a veces se añade arena a la tierra y algo de materia orgánica,en forma de turba, viruta de madera o corteza desmenuzada. También se usanotras mezclas, sin el agregado de tierra, para la propagación y cultivo deplantas. Pueden citarse mezclas de turba y perlita o turba y arena, pero al serpobres en nutrientes, necesitan el agregado de fertilizantes. El humus delombriz puede utilizarse satisfactoriamente por todas las buenas característicasque presenta.

Biran, L. and A. H. Halevy. 1973. The relationship

between rooting of dahlia cuttings and the presence and typeof bud. Phys. Plant. 28:244-47

Breen, P. J. and T. Muraoka. 1974. Effect of leaves andcarbohydrate content and movement of 14C- assimilate in plum cuttings. Jour.Amer. Soc.

Hort. Sci. 99(4):326-32.

Cline, M. N., and D. Neely. 1983. The histology andhistochemistry of the wound healing process in

geranium cuttings. Jour. Amer. Soc. Hort. Sci.

108:452-96.

Davies, F. T., Jr., and H. T. Hartmann. 1988. Thephysiological basis of adventitious root formation. Acta Hort. 227:113-20.

Davis, T. D. 1989. Photosynthesis during adventitiousrooting. In Adventitious root formation in cuttings, T. D. Davis, B. E. Haissig,and N.

Sankhla, eds. Portland, Oreg.: Dioscorides Press.

Davis, T. D., and J. R. Potter. 1981. Current photosyntate asa limiting factor in adventitious root formation in leafy pea cuttings. Jour.Amer.

Soc. Hort. Sci. 106:278-82.

Hartmann, H.T.; D.E. Kester and F.T. Davies. PlantPropagation. Principles and Practices. Fifth

Edition. 1992.

Marsden, M. E. 1955. The history of vegetative propagation.Rpt. 14th Inter. Hort. Cong., Vol.

2, pp. 1157-64.

Mirabelli, E. 1995. Curso intensivo de lombricultura.Centrode lombricultura. Facultad de Agronomía

(UBA).

Richards, S. J., J. E. Warneke, and F. K. Aljibury. 1964. Physical propertiesof soil mixes used by nurseries. Calif. Agr. 18(5):12-13.

Autor: