RESUMEN
Durante la germinación y los primeros días de crecimiento de la plántula,
ocurren numerosos procesos fisiológicos, en los que la presencia de una
sustancia tóxica o la concentración elevada de nutrientes puede interferir
alterando la supervivencia y el desarrollo normal del vegetal. En este estudio
se evaluó la influencia de un lodo anaerobio líquido propuesto para su uso
como fertilizante en alternativa a los nocivos agroquímicos, sobre la
emergencia y los primeros estadios de crecimiento de plantas terrestres,
cultivadas en condiciones óptimas de crecimiento, siguiendo la normativa de
OECD (Organization for Economical Cooperation and Development), en su protocolo
208 de abril 1984, modificado. Luego del tratamiento de tres grupos de plantas
(sorgo, lechuga y rábano), con sustancia pura a prueba (100%) y diluciones de
esta (25, 50, 75), se comprobó su inocuidad y sus potencialidades como
estimulante del crecimiento. Sin embargo, el análisis morfológico arrojó que
por encima del 50%, la elevada concentración de nutrientes provocó evidentes
malformaciones en estructuras primordiales de los vegetales tratados.
Palabras claves: biofertilizante, evaluación toxicológica, malformaciones en
estructuras primordiales.
EVALUATION OF THE TOXICITY OF A ANAEROBE MUD IN TERRESTRIAL PLANTS
ABSTRACT
In the plants, during the germination and the first days of growth they
happen numerous physiologic events, in those the presence of a toxic substance
or a high concentration of nutrients can interfere altering the survival and the
normal development of vegetable. In this study, following the OECD (Organization
for Economical Cooperation and Development) normative in its protocol 208
(april, 1984), was evaluated the influence of a liquid anaerobe mud proposed for
its use as fertilizer in alternative to the noxious agrochemicals, on the
emergency and the first days of growth of terrestrial plants, cultivated under
good growth conditions. After the treatment of three groups of plants (sorghum,
lettuce and radish), with the pure substance (100%) and their dilutions of (25,
50, 75), we prove their innocence and their potentialities as stimulant of the
vegetable growth. However, the morphological analysis hurtled that above 50%,
the high concentration of nutrients caused evident malformations in primordial
structures of the treaties vegetables.
Key words: biofertilizer, toxicological evaluation, malformations in primordial
structures.
INTRODUCCIÓN
Los suelos vírgenes suelen contener cantidades adecuadas de todos los
elementos necesarios para la correcta nutrición de las plantas. Pero cuando una
especie determinada se cultiva año tras año en un mismo lugar, el suelo puede
agotarse y ser deficitario en uno o varios nutrientes. En tal caso, es preciso
reponerlos en forma de fertilizantes. Como fertilizante o abono se conoce a
sustancias o mezclas químicas (naturales o sintéticas) utilizadas para
enriquecer el suelo y favorecer el crecimiento vegetal.
Las plantas no necesitan compuestos complejos, del tipo de las vitaminas o los
aminoácidos, pues sintetizan todos los que precisan. Sólo exigen una docena de
elementos químicos, que deben presentarse de forma tal que la planta los pueda
absorber. Los tres elementos que deben contener casi todos los fertilizantes
son: nitrógeno, fósforo y potasio aunque en ocasiones, es preciso añadir a éstos
pequeñas cantidades de boro, cobre y manganeso.
Debido al incremento en el costo de los fertilizantes químicos y a la
contaminación que algunos provocan en el ambiente cuando se utilizan
irracionalmente, es necesario encontrar nuevas alternativas de fertilización,
económicas y más eficientes. Se considera como una alternativa viable la
utilización de las fuentes orgánicas locales y regionales que tradicionalmente
se han subutilizado, entre las que destacan las excretas animales.
Las excretas contienen nutrientes que los cultivos pueden utilizar, pero también
poseen altas concentraciones de coliformes fecales que producen enfermedades
infecciosas. Por ello, para utilizarlas como fertilizantes, es necesario darles
un tratamiento de biodigestión que elimine estos agentes y se reduzca así la
contaminación ambiental al convertir los excrementos en residuos útiles y sin
riesgo de transmisión de enfermedades (McCaskey, 1990).
La digestión anaerobia es un proceso complejo desde el punto de vista microbiológico;
al estar enmarcado en el ciclo anaerobio del carbono, es posible en ausencia de
oxígeno, transformar la sustancia orgánica en biomasa y compuestos inorgánicos
en su mayoría volátiles: CO2, NH3, H, S, N2 y CH4 (Soubes, 1994). Como
principales ventajas se conoce que: se optimiza el material orgánico utilizado,
ya que se captan todos los productos y subproductos (gases y líquidos con sólidos
disueltos) generados en la degradación, por lo cual existe poca pérdida de
elementos nutritivos, cosa que no sucede en la biodegradación aerobia, y por
demás los residuos orgánicos obtenidos después de la biodegradación
anaerobia (efluente) tienen mayor riqueza nutricional que los obtenidos en la
biodegradación aerobia (Noyola y Monroy, 1994). El efluente no posee mal olor,
a diferencia del estiércol fresco, tampoco atrae moscas y puede aplicarse
directamente al campo en forma líquida, en las cantidades recomendadas
(McCaskey, 1990). De acuerdo con Mandujano 1981, un metro cúbico de bioabono
producido y aplicado diariamente, puede fertilizar más de 2 ha de tierra por año
y proporcionar hasta 200 kg N/ha de los que estarán disponibles en el primer año
entre 60 y 70 kg. Además el bioabono no deja residuos tóxicos en el suelo y
eleva la calidad del mismo.
Aunque esenciales para la agricultura moderna, el abuso de cualquier
fertilizante puede ser nocivo para las plantas, los cultivos y el suelo. La
lixiviación de los nutrientes puede causar contaminación del agua y
alteraciones como la eutrofización o desarrollo excesivo de la vegetación.
En este estudio se plantearon los siguientes objetivos: determinar los posibles
efectos de la sustancia en estudio sobre la emergencia (CL50) y el crecimiento
(CE50) de variedades de plantas terrestres luego de la incorporación al suelo
en una aplicación única; registrar la ocurrencia o no de alteraciones de tipo
morfológicas en las estructuras esenciales de las plántulas tratadas; emitir
un criterio presuntivo de toxicidad del producto a evaluar.
MATERIALES Y MÉTODOS
Los ensayos de toxicidad se realizaron en el laboratorio de ecotoxicología
de TOXIMED en el período comprendido entre noviembre y diciembre de 2004.
Ensayo 1: Test de Lactuca sativa (120h de exposición)
Se realizó un ensayo de toxicidad aguda (120 h de exposición) en el que se
evaluaron los efectos fitotóxicos de un lodo anaerobio líquido puro, producto
de la fermentación de estiércol vacuno en el proceso de germinación de
semillas de lechuga (Lactuca sativa L.) y en el desarrollo de las plántulas
durante los primeros días de crecimiento. Se probaron un control (agua
corriente pH 6,9) y 6 concentraciones: 3, 8, 20, 50, 75, 100% (tratamientos),
usando como solvente agua corriente. Como puntos finales para la evaluación de
los efectos, se determinó la CE/CIg 50 (concentración efectiva a la cual se
produjo inhibición de la germinación al 50% respecto al grupo control); la
CE/CIr 50 (concentración efectiva a la cual se produjo inhibición en la
elongación de la radícula al 50% respecto al grupo control) y la CE/CIh 50
(concentración a la cual se produjo inhibición en la elongación del hipocótilo
al 50% respecto al grupo control).
Ensayo 2: Test de crecimiento de plantas terrestres (suelo natural)
Se realizó siguiendo la metodología propuesta por la OECD (1993), en el
protocolo 208 del 4 de Abril de 1984, “Ensayo de Crecimiento de Plantas
Terrestres”, donde se determinaron los posibles efectos tóxicos del lodo
anaerobio sobre la emergencia de semillas y sobre los estadios tempranos de
crecimiento de plantas de sorgo, lechuga y rábano (seleccionadas por su
importancia ecológica, económica y su elevada sensibilidad), después de una
aplicación única directa al suelo. Las semillas utilizadas fueron de calidad
comercial certificada, suministradas por la Empresa Provincial de Semillas
Varias del MINAGRI de Santiago de Cuba.
Se probaron un control y cuatro concentraciones: 25, 50, 75, 100%
(tratamientos), en bloques aleatorios diseñados con 3 réplicas por
tratamiento. En cada réplica se plantaron 10 semillas, después de incorporada
la sustancia a prueba al suelo natural (sin esterilizar, pH= 7 y 3% de materia
orgánica), certificado por el Instituto de Suelos del MINAGRI.
La plantación se realizó en recipientes de vidrio de 9.5 cm de diámetro x
11.5 cm de altura, se rellenaron con 500g del suelo natural, manteniéndolo a
una humedad de un 60-70% de saturación. La temperatura ambiental relativa se
mantuvo entre los 25 y 27ºC día/23-25ºC noche.
En este ensayo, se determinó la CE 50 como la concentración a la cual el
cambio en el crecimiento es el 50% del crecimiento del grupo control; la CL 50
como la concentración a la cual el cambio en la emergencia es el 50% de la
emergencia del control. El crecimiento se expresó en términos de peso húmedo
de las plantas y la emergencia se refiere a la presencia de las plántulas sobre
la superficie del suelo.
Tratamiento estadístico:
Para el cálculo de los valores medios, porcentuales y las concentraciones
efectivas CE 50 y CL50 se empleó el programa Microsoft Excel. Las variables CE
50 y CL50 se calcularon a partir del estadígrafo Pronóstico el cual calcula o
predice un valor futuro en una tendencia lineal usando valores existentes.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Test de Lactuca sativa (120h de exposición)
En el ensayo de toxicidad aguda basado en el test de Lactuca sativa, se
obtuvo un 90 % de germinación de los controles, lo que valida la prueba.
En la dilución de la sustancia correspondiente al 3% se observó estimulación
de la germinación y el crecimiento general de las plántulas tratadas. Un
comportamiento similar resultó para la elongación de la radícula y del hipocótilo
la exposición al 8%, ver Figura 1.
Las principales anomalías en el sistema radicular y apical comenzaron a
observarse a partir de la dilución correspondiente al 20%, siendo máximas en
la mayor concentración probada. A continuación se listan las más notables.
En el sistema radicular:
· raíces raquíticas;
· raíces atrofiadas;
· geotropismo negativo.
En el sistema apical:
· hipocótilo corto y grueso o ausente;
· hipocótilo curvado formando un lazo;
· hipocótilo retorcido formando un espiral;
· cotiledones hinchados y en ocasiones con presencia de manchas oscuras.
Estos defectos estuvieron acompañados de valores crecientes de inhibición de
la elongación de la radícula y del hipocótilo. En cuanto al porcentaje de
germinación la mayor inhibición ocurrió en las concentraciones superiores,
ver Figura 1.
En la Figura 2 (gráficos 1; 2; 3) muestran los valores de concentración
estimados, correspondientes al 50% de inhibición de la elongación radicular
(CE/CIr 50), del hipocótilo (CE/CIh 50) y de la germinación (CE/CIg 50).

Figura 1. Respuesta de las semillas de Lactuca sativa frente a las
concentraciones en estudio. Control; 3; 8; 20; 50; 75; 100%, de izquierçda a
derecha.

Figura 2. Valores de concentración estimados, correspondientes al 50% de
inhibición de la elongación radicular (CE/CIr 50), del hipocótilo (CE/CIh 50)
y de la germinación (CE/CIg 50).

La Figura 3 muestra el detalle de las principales anomalías registradas.
Figura 3. Detalle de las principales anomalías. Arriba: plántula con un
desarrollo normal. Debajo: principales malformaciones observadas a partir de la
dilución correspondiente al 20%: 1 Geotropismo negativo; 2 Hipocótilo corto y
grueso-cotiledones hinchados; 3 y 4 Hipocótilo formando un espiral. En todos
los casos, raíz primaria defectuosa por atrofia y raquitismo.
Ensayo de crecimiento de plantas terrestres en suelo natural
Al finalizar el ensayo, en la totalidad de los controles se obtuvo una
emergencia igual o superior al 80% del total de semillas plantadas, con
crecimiento normal y libre de malformaciones, por lo que se considera válida la
prueba.
A continuación se muestran los resultados obtenidos para cada especie en las
Tablas 1 a la 6 y las Figuras 4 a la 6.
En general no ocurrieron variaciones de trascendencia en los parámetros
analizados (crecimiento y emergencia) en las plántulas tratadas con respecto al
comportamiento de los controles aunque los registros de malformaciones con el
aumento de la concentración concuerdan con los resultados obtenidos en el
ensayo 1.
Sorgo (Sorghum bicolor)
Tabla 1. Resultados del crecimiento de las plántulas de sorgo
|
Concentración
(%)
|
P(g)
|
C
|
|
control
|
0.1236±0.0298
|
-
|
|
25
|
0.1071±0.0378
|
86.68
|
|
50
|
0.1209±0.0329
|
97.7
|
|
75
|
0.1078±0.0540
|
87.24
|
|
100
|
0.1525±0.0657
|
+123.38
|
P: promedio del peso húmedo por concentración
C: porcentaje de crecimiento por concentración respecto al grupo control
+ estimulación
Tabla 2. Resultados de la emergencia de las plántulas de sorgo
|
Concentración
(%)
|
T
|
E
|
G
|
|
control
|
30
|
25
|
83.3
|
|
25
|
30
|
21
|
84
|
|
50
|
30
|
23
|
92
|
|
75
|
30
|
23
|
92
|
|
100
|
30
|
24
|
96
|
T: total de semillas expuestas
E: total de plántulas que emergen por concentración
G: porcentaje de emergencia por concentración respecto al grupo control

Figura 4. Alteraciones morfológicas en las plántulas de sorgo. A, plántula
control. B, C, D, E, plántulas tratadas (25, 50, 75, 100% respectivamente).
Mesocótilo defectuoso: retorcido y en forma de lazo
Lechuga (Lactuca sativa)
Tabla 3. Resultados del crecimiento de las plántulas de lechuga
|
Concentración
(%)
|
P(g)
|
C
|
|
control
|
0.0271±0.0154
|
-
|
|
25
|
0.0345±0.0144
|
+127.5524
|
|
50
|
0.0205±0.0091
|
75.789508
|
|
75
|
0.0262±0.0124
|
96.923196
|
|
100
|
0.0243±0.0147
|
89.670387
|
P: promedio del peso húmedo por concentración
C: porcentaje de crecimiento por concentración respecto al grupo control
+ estimulación
Tabla 4. Resultados de la emergencia de las plántulas de lechuga
|
Concentración
(%)
|
T
|
E
|
G
|
|
control
|
30
|
24
|
80
|
|
25
|
30
|
22
|
91.6
|
|
50
|
30
|
19
|
79.1
|
|
75
|
30
|
24
|
100
|
|
100
|
30
|
20
|
83.3
|
T: total de plántulas expuestas por
concentración
E: total de plántulas que emergen por concentración
G: porcentaje de emergencia por concentración respecto al grupo control

Figura 5. Alteraciones morfológicas en las plántulas de lechuga. A, plántula
control. B, C, D, plántulas tratadas (50, 75, 100% respectivamente). Hipocótilos
defectuosos: curvado o formando un lazo
Rábano (Raphanus sativus)
Tabla 5. Resultados del crecimiento de las plántulas de rábano
|
Concentración
(%)
|
P(g)
|
C
|
|
control
|
0.1929±0.0607
|
-
|
|
25
|
0.2458±0.0742
|
+127.4298
|
|
50
|
0.2635±0.0911
|
+136.5762
|
|
75
|
0.2221±0.0857
|
+115.1348
|
|
100
|
0.2441±0.0890
|
+126.5399
|
P: promedio del peso húmedo por
concentración
C: porcentaje de crecimiento por concentración respecto al grupo control
+ estimulación
Tabla 6. Resultados de la emergencia de las plántulas de rábano
|
Concentración
(%)
|
T
|
T
|
G
|
|
control
|
30
|
24
|
80
|
|
25
|
30
|
24
|
100
|
|
50
|
30
|
22
|
91.6
|
|
75
|
30
|
26
|
+108.3
|
|
100
|
30
|
23
|
95.8
|
E: total de plántulas que emergen
por concentración
T: total de plántulas expuestas por concentración
G: porcentaje de emergencia por concentración respecto al grupo control
+ estimulación

Figura 6. Alteraciones morfológicas en las plántulas de rábano. A, plántula
control. B, C, D, plántulas tratadas (50, 75, 100% respectivamente). Hipocótilos
defectuosos: gruesos y curvados.
El conocimiento de las características físicas, químicas y microbiológicas
de los lodos de digestión anaerobia de estiércol vacuno es de vital
importancia cuando se propone con fines agrícolas como bioabonos o
biofertilizantes. De la calidad de los mismos, entre otros factores, depende el
suministro adecuado de nutrientes a las plantas; por lo cual tiene una
influencia directa en el desarrollo y rendimiento de los cultivos.
Los datos de la caracterización físico-química del lodo se ofrecen en la
Tabla 7.
Tabla 7. Caracterización de los lodos de digestión anaerobia. (Rodríguez
S., 2004)
|
Parámetros
|
Lodo
Líquido (%)
|
|
-
Nitrógeno.
|
0,18
|
|
-
Fósforo.
|
0,25
|
|
-
Potasio.
|
0,14
|
|
-
Calcio.
|
-
|
|
-
Magnesio.
|
8,31
|
|
-
Azufre.
|
0,34
|
|
-
Cloro.
|
-
|
|
-
Manganeso.
|
0,29
|
|
-
Molibdeno.
|
0,003
|
|
-
Cobre.
|
0,078
|
|
-
Hierro.
|
1,73
|
|
-
Cinc.
|
0,073
|
|
-
Sodio.
|
38,10
|
|
-
Plomo.
|
0,0182
|
|
-
Sulfato
|
4.8
|
|
-
Materia orgánica.
|
0,54
|
|
-
pH.
|
7,3
|
|
-
Humedad.
|
98,82
|
|
-
Materia Seca.
|
1,18
|
|
-
Cenizas.
|
0,31
|
|
-
Color.
|
carmelita
claro a amarillento
|
|
-
Olor.
|
débil
a sulfuro.
|
|
-
Consistencia.
|
-
|
|
-
Poder disolvente.
|
alto
|
|
-
Efecto residual en el suelo.
|
bajo
a medio.
|
En el estudio bioquímico se
determinó la presencia de hormonas reguladoras del desarrollo vegetal, ácido
indolacético, ácido indolbutírico y ésteres de ácido indolacético, hecho
reportado en la bibliografía por otros autores, para productos naturales aunque
empleando otros sustratos (Rodríguez S., 2004).
En el análisis microbiológico se determinó una población heterogénea
consistente en bacterias, hongos filamentosos y levaduras. La existencia de una
microflora microbiana capaz de sobrevivir en este residual resulta de
importancia por su contribución al enriquecimiento de la microflora edáfica
que intervienen en los procesos de descomposición del material orgánico (Rodríguez
S., 2004).
El principal aporte de este producto de fermentación anaerobia es el alto
contenido de Nitrógeno, Fósforo y Potasio, además la riqueza de
oligoelementos como Fe, Cu, Zn, Mo, esenciales para el desarrollo de las
plantas. El Nitrógeno es el componente de las proteínas y de compuestos orgánicos
y favorece el crecimiento en los vegetales. El Fósforo es la parte elemental de
compuestos proteicos de alta valencia e influye en la formación de las semillas
y de las raíces y es el regulador principal de todos los ciclos vitales de la
planta y el potasio, interviene en la síntesis de proteína y de carbohidratos,
le da firmeza a los tejidos y calidad a los frutos. El Hierro, el Manganeso, el
Cobalto y el Zinc intervienen en la síntesis de enzimas y el Mo es de vital
importancia para que se efectúe la fijación biológica del Nitrógeno atmosférico.
El azufre (en forma de iones sulfatos) es uno de los elementos bioenergéticos
indispensables para el crecimiento y desarrollo de las plantas, su rol es
importante porque forma parte de las albúminas y porque activa los procesos
enzimáticos, las funciones hormonales la formación de clorofila y forma parte
de los glucósidos y algunos ácidos grasos de ciertos vegetales, su deficiencia
en el suelo puede provocar fundamentalmente clorosis y afecta el crecimiento
normal de las plantas. Los lodos evaluados presentaron un promedio de sulfatos
de 4,8 % el cual resulta de interés agronómico por las razones anteriormente
expuestas.
Todos estos nutrientes son necesarios para el crecimiento y desarrollo de los
procesos fisiológicos, para la microflora edáfica que intervienen en la
descomposición de la materia orgánica en el suelo, la fijación del Nitrógeno
atmosférico y la solubilización del fósforo; procesos vitales que mantienen
un equilibrio en el suministro constantes de nutrientes a las plantas.
Los concordantes resultados obtenidos de ambos ensayos muestran que aunque la
fermentación anaerobia de la materia orgánica produce un residuo no tóxico y
de excelentes propiedades fertilizantes a competir o complementarse con los
agroquímicos en cultivos de alto rendimiento: plantas ornamentales, flores de
corte, plantas en maceta, hortalizas en sistema de producción intensiva en
campo, en invernaderos y en hidroponía, elevando la calidad del suelo, siempre
que sea posible deben realizarse estudios experimentales de laboratorio y de
campo para poder tomar en cuenta los efectos residuales de los nutrientes en el
crecimiento de los cultivos y a la hora de formular las recomendaciones en
materia de diluciones, ya que el exceso de algunos de estos constituyentes puede
manifestase en signos de toxicidad como los que se muestran en la Tabla 8.
Tabla 8. Signos de toxicidad reportados por exceso de algunos nutrientes
|
Elemento
|
fisiopatías
|
|
Cobre
|
Desarrollo
de hojas color verde oscuro, seguido de clorosis
|
|
Hierro
|
Follaje
verde oscuro; enanismo y desarrollo de colores pardos a púrpura en
algunas plantas
|
|
Manganeso
|
Clorosis
y muerte de hojas viejas, desarrollo generalizado de manchas negruzcas o
pardas y secado de la punta de las hojas
|
|
Molibdeno
|
Amarillamiento
y oscurecimiento foliar
|
|
Cinc
|
Clorosis
y muerte de la punta de las hojas, además de clorosis entre nervaduras
de las hojas jóvenes y crecimiento retardado de la planta
|
<http://www.new-plant.com.ar/infonewplant/Info_NewPlant_No1.pdf.>
Es conveniente señalar que aunque en este estudio se analizaron solamente las
primeras etapas de crecimiento, los criterios antes expuestos se toman como
regla general en el afán de aplicar una fertirrigación adecuada para obtener
plantas sanas, de alta calidad y que satisfagan las expectativas de todos, además
de la protección del medio ambiente. También es importante considerar la
ventaja económica adicional para los productores que representa la dilución,
al poder fertilizar más con menos cantidad de producto que se extraiga del
digestor.
CONCLUSIONES
Teniendo en cuenta los resultados observados en el estudio en suelo natural
podemos concluir que el producto posee un escaso poder inhibitorio sobre la
emergencia y los primeros estadios de crecimiento de las plántulas tratadas
aunque las diluciones por encima del 50% pueden inducir alteraciones de tipo
morfológicas en estructuras primordiales, comprobándose la sensibilidad de
estas a la concentración excesiva de nutrientes, por lo que de manera general
el efecto fitotóxico comienza a considerarse a partir de esta dilución.
RECOMENDACIONES
Recomendamos su aplicación en diluciones inferiores al 50%, estudiando los
requerimientos nutricionales del cultivo vegetal donde se vaya a aplicar;
igualmente la realización de estudios de campo para aumentar los datos
referentes a la actividad del producto en el ambiente natural con el empleo de
estas y otras especies vegetales.
REFERENCIAS
Mandujano M., I. 1981. Biogas: Energía y fertilizantes a partir de desechos
orgánicos. Manual para el promotor de la tecnología. Organización
Latinoamericana de Energía. Cuernavaca, Morelos, México.
McCaskey, A.T. 1990. Microbiological and chemical pollution potential of swine
waste. pp. 12-32. In: Memorias del Primer Ciclo Internacional de Conferencias
sobre Manejo y Aprovechamiento de Estiércol. CINVESTAV. Guadalajara, Jal., México.
Rodríguez Pérez Suyén et al. 2004. Caracterización de lodos aerobios líquidos.
Universidad de Oriente. Facultad de Ciencias Naturales. Centro de Estudios de
Biotecnología Industrial.
OECD Organization for Economical Cooperation and Development 1993. Guidelines
for testing of chemicals 208 Adopted 4 April 1984.
Soubes, M. 1994. Biotecnología de la digestión anaerobia. pp. 136-148. In: III
Taller y Seminario Latinoamericano “Tratamiento de Aguas Residuales”.
Montevideo, Uruguay. Tchobanoglous, G. y E.D. Schoeder. 1985. Water quality:
Characteristics, modeling, modification. Addison-Wesley. Reading, MA.
Noyola A. y Monroy O. 1994. Experiencias y expectativas del tratamiento de
residuales porcinos en México. Universidad Autónoma Metropolitana. Iztapalapa.
pp. 331-340. In: III Taller y Seminario Latinoamericano “Tratamiento Anaerobio
de Aguas Residuales”. Montevideo, Uruguay.
Info New Plant. Diciembre 1998. Los síntomas foliares de deficiencias de
nutrientes. Disponible en:
http://www.new-plant.com.ar/infonewplant/Info_NewPlant_No1.pdf. Leído 2 de
septiembre de 2005.
AUTORES
*Lic. Patricia Aportela Gilling (1),
Lic. Yuleidis Gonzáles Pérez (2),
Tec. Ebert Marcos Albear (3),
Tec. Irela Pérez Andrés (4),
M.sc. Suyén Rodríguez (5),
Lic. Adis Terry Brown (6).
(1) (2) (3) (4) Centro de Toxicología y Biomedicina (TOXIMED). Instituto
Superior de Ciencias Médicas Santiago de Cuba.
Autopista Nacional Km 1½
Código Postal 90400. Apartado Postal 4033. Santiago de Cuba.
Tel.: (53) (22) 64 3796, 64 3926, 64 4095
Fax: (53) (22) 68 7188
e-mail: aportela@toxi.scu.sld.cu, patriciaaportela@yahoo.es
(5) Centro de Estudios de Biotecnología Industrial (CEBI). Universidad de
Oriente. Santiago de Cuba.
Patricio Lumumba s/n.
CP: 90 500. Santiago de Cuba.
Tel.: 63 2095
Fax: 632689